引 言

蛋白質(zhì)和長肽在生物體系中扮演著至關(guān)重要的角色，并且它們是許多重要治療藥物的構(gòu)成要素。然而，這些生物分子的研究進展常常受到基于時間密集型表達技術(shù)和原生化學(xué)連接方法的限制。固相多肽合成（SPPS）為直接合成具有特定序列的蛋白質(zhì)提供了一種途徑，并能夠迅速產(chǎn)生結(jié)構(gòu)類似物。盡管如此，由于在合成過程中雜質(zhì)的累積和產(chǎn)物聚集的傾向，長肽和蛋白質(zhì)的SPPS合成面臨著不小的挑戰(zhàn)。在早期，SPPS主要被應(yīng)用于生產(chǎn)較短的片段，以便進行原生化學(xué)連接，而對于較長序列的合成能力相對受限[1]。近來，快速流動式合成方法展示了其以極短周期時間組裝長序列的顯著潛力。但這種方法的一個缺點是，它需要使用大量的氨基酸（通常是≥ 100當(dāng)量），并且伴隨著大量廢物的產(chǎn)生。

微波加熱技術(shù)現(xiàn)在已經(jīng)被普遍應(yīng)用于多肽合成，并且已經(jīng)證實其能夠有效地克服肽鏈聚集的難題，并促進困難反應(yīng)的順利進行[3,4]。通過結(jié)合優(yōu)化的碳二亞胺耦合條件和微波加熱（CarboMAX™ 技術(shù)），可以實現(xiàn)最小程度的差向異構(gòu)化，并且與傳統(tǒng)使用鏻鹽和強堿的更為激烈激活方法相比，能夠?qū)崿F(xiàn)更高純度的合成效果。此外，采用無需中間排放步驟的一鍋法耦合和脫保護流程，使得整個過程更加迅速和高效。

在2022年，推出了新一代的微波肽合成器系列——Liberty PRIME 2.0和Liberty Blue 2.0。這些先進設(shè)備采用了創(chuàng)新的頂部沖洗技術(shù)，該技術(shù)在肽合成過程中能夠保持反應(yīng)容器表面的清潔度。通過預(yù)防揮發(fā)性試劑的再冷凝，頂部沖洗技術(shù)有效避免了對后續(xù)反應(yīng)的污染。隨著長蛋白質(zhì)合成的進行，每個反應(yīng)步驟中即使是微小的純度提升也會累積起來，最終轉(zhuǎn)化為整體純度的顯著提高。利用Liberty PRIME 2.0，成功合成了一系列具有挑戰(zhàn)性的蛋白質(zhì)，包括76個氨基酸的泛素、86個氨基酸的胰島素原、89個氨基酸的巴氏蛋白、99個氨基酸的類膠原蛋白序列和HIV蛋白酶，以及127個氨基酸的MDM2。

圖1. Liberty PRIME 2.0

蛋白質(zhì)合成流程經(jīng)過精心優(yōu)化，僅需要10到20當(dāng)量的氨基酸，平均每個合成周期只需大約7.5分鐘，這樣的高效率使得目標(biāo)蛋白可以在一晚上的時間內(nèi)（每輪運行10至17小時）以較高的初始純度完成合成。到了第二天，所合成的蛋白質(zhì)便被分離并轉(zhuǎn)移到Prodigy純化系統(tǒng)，在那里它們通過60°C的升溫色譜法得到進一步凈化。這一氵?程不僅速度迅捷，而且試劑的使用也木及具效率（詳見表1）。

材料與方法

試 劑

從CEM Corporation（Matthews, NC）獲得的以下Fmoc氨基酸包含所示的側(cè)鏈保護基團：Ala, Asn(Trt), Arg(Pbf), Asp(OMpe), Asp(OtBu)-(Dmb)Gly, Cys(Trt), Gln(Trt), Glu(OtBu), Gly, His(Boc), Ile, Leu, Lys(Boc), Phe, Pro, Met, Ser(tBu), Thr(tBu), Trp(Boc), Tyr(tBu), 和 Val。Rink Amide ProTide™ LL樹脂（0.20 meq/g替代）也來自CEM Corporation。N,N’-二異丙基碳二亞胺（DIC）、吡咯烷、三氟乙酉夋（TFA）、3,6-二氧雜-1,8-辛二硫醇（DODT）和三異丙基硅烷（TIS）來自Sigma-Aldrich（St. Louis, MO）。二氯甲烷（DCM）、N,N-二甲基甲酰胺（DMF）、無水乙酉迷（Et2O）和乙酸來自VWR（West Chester, PA）。LC-MS級水（H2O）和LC-MS級乙腈（MeCN）來自Fisher Scientific（Waltham, MA）。

蛋白質(zhì)合成

蛋白質(zhì)合成在CEM Liberty PRIME 2.0自動化微波肽合成儀上進行，采用Rink Amide ProTide® LL樹脂，合成規(guī)模為0.05或0.1毫摩爾。脫保護步驟使用DMF中的吡咯烷進行處理。偶聯(lián)反應(yīng)則通過使用10或20當(dāng)量的Fmoc保護氨基酸與DIC和Oxyma Pure在DMF中反應(yīng)（遵循改良的CarboMAX方案）。蛋白質(zhì)的切割在室溫或38°C下進行，使用的是TFA/H2O/TIS/DODT混合物。切割完成后，蛋白質(zhì)通過乙酉迷沉淀并經(jīng)過夜凍干處理以獲得最終產(chǎn)品。

蛋白質(zhì)純化

蛋白質(zhì)通過裝備有Intrepid C18, 21.2 mm x 250 mm, 5 μm色譜柱的Prodigy系統(tǒng)上的高溫HPLC進行純化。粗蛋白首先溶解在水中并過濾后注射進樣。分離在40或60°C下進行，使用含有0.1% TFA的(i)水和(ii)乙腈的梯度洗脫。

蛋白質(zhì)分析

蛋白質(zhì)在裝備有Q Exactive plus MS的ThermoFisher UPLC系統(tǒng)上進行分析，使用Acquity UPLC BEH C8色譜柱（1.7 mm x 100 mm）。峰分析在Chromeleon軟件上完成。分離使用含有0.05% TFA的(i)水和(ii)乙腈的梯度洗脫進行。

成 果

表1. 每種蛋白質(zhì)的合成時間和產(chǎn)生的廢液總量

表2. 每個蛋白質(zhì)的氨基酸序列

加粗的DG表示使用了Asp(OtBu)-(DMB)Gly

圖1.泛素樣品粗制（1、2）和純化后（3、4）的UPLC-MS 分析

圖2.原胰島素粗樣品粗制(1、2)和純化后(3、4)的 UPLC-MS 分析

圖3.芽孢桿菌RNA酶樣品粗制(1、2)和純化后(3、4)的 UPLC-MS 分析

圖5.膠原蛋白樣品粗制(1、2)和純化后(3、4)的 UPLC-MS 分析

圖6.MDM2樣品粗制(1、2)和純化后(3、4)的 UPLC-MS 分析